植物组织的取材比较容易，植物细胞离体后变化不象动物细胞那样迅速，但植物细胞的细胞壁阻碍着固定液的迅速渗透。因此，植物材料的取材宜先切成薄片状，经适当固定后再切成小方块。

如组织含有较多空气，不易下沉浸入固定液，可以使用真空泵抽气方式使之下沉。

1.取材固定：

将切下的小薄片迅速置于pH值为7.2的固定液——2.5%戊二醛（含水量大的组织+2%多聚甲醛）中，10分钟后按观察需求精准切为1mm³，置于pH值为7.2的固定液——2.5%戊二醛（含水量大的组织+2%多聚甲醛）中，并做好标签。

2.后固定：

(1)室温条件使用0.1MPB缓冲液冲洗样品3次，15min/次；

(2)在冰盒上使用还原性锇酸(1%锇酸+1.5%亚铁氰化钾)后固定样品1h。

3.铀染：

(1)室温条件使用0.1MPB缓冲液冲洗样品3次，15min/次；

(2)室温条件使用去离子水清洗样品3次，5min/次；

(3)室温条件使用1%铀染液孵育1h或4℃过夜；

(4)室温条件去离子水清洗样品3次，15min/次。

4.梯度脱水：

在4℃环境中梯度酒精（50%、70%、80%、90%各1次，100%3次，10min/次）脱水；100%环氧丙烷脱水2次，10min/次。

5.渗透：室温条件使用摇床

Epon812：环氧丙烷=1:1，8h；

Epon812：环氧丙烷=2:1，8h；

Epon812：环氧丙烷=3:1，8h；

Epon812,8h;

Epon812,8h。

6.包埋固化:

包埋样品，60℃聚合24-48h。

7.修块切片染色：

将样品表面修成梯形，使用超薄切片机进行超薄切片，切片序列收集于铜网上。将载有切片序列的铜网使用铀染液在室温条件染色20min，去离子水清洗干净；使用铅染液在室温条件染色5min，去离子水清洗干净。最后将染好的铜网放回切片盒内。

8.电镜观察：

注意事项：

1.取材需迅速，避免因组织离体后带来的自溶现象。

2.器械需锋利，避免挤压和牵拉组织。

3.样品制备过程中需始终处于试剂中。

4.更换试剂时要迅速且充分，无其他试剂残留。

植物细胞制样观察（TEM）

动物细胞器的观察